《自然》:生物物理所王晓晨/冯巍团队发现溶酶体膜分裂因子HPO-27
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溶酶体是细胞内的物质降解、循环和信号中心,对细胞稳态调控、发育和衰老至关重要。溶酶体功能紊乱与多种疾病的发生发展密切相关。为了满足不同的生理需求,溶酶体通过不断的融合和分裂重塑其形态与功能。相较于融合过程,目前对于溶酶体分裂过程的了解非常有限,相关调控因子及作用机制仍不清楚,执行溶酶体膜分裂的分子尚未被揭示。
3月27日,中国科学院生物物理研究所王晓晨课题组与冯巍课题组合作在《自然》(Nature)杂志在线发表论文,发现了溶酶体膜分裂因子并揭示了其作用机制。
研究人员建立了以线虫为模式的多细胞生物溶酶体研究体系,通过非偏好性遗传筛选鉴定得到HEAT 重复蛋白HPO-27,确认其与人类MROH1同源。研究发现,HPO-27及MROH1含有37个HEAT重复序列,它们的功能目前尚未被解析。
通过活体成像追踪和冷冻电镜等实验手段,研究人员发现HPO-27在线虫的各个发育阶段和多种组织中均有广泛的表达。hpo-27功能缺陷导致线虫表皮细胞中管状溶酶体的积累,形成管状网络,并最终引起溶酶体结构的损伤。
溶酶体功能分析结果表明,HPO-27和MROH1功能缺陷会导致溶酶体酸性异常、水解酶活性降低以及降解能力减弱。hpo-27突变体线虫表现出胚胎死亡、幼虫发育停滞和寿命缩短等严重缺陷。这些结果表明,HPO-27对于维持线虫的溶酶体形态、结构和功能完整性,以及正常的生命活动至关重要。
研究者在线虫及哺乳动物培养细胞中同步开展系列实验,探究了HPO-27和MROH1调控溶酶体形态及功能的作用机制。
(1)共定位分析显示,HPO-27及MROH1均与溶酶体存在共定位并富集在溶酶体膜的特定区域。溶酶体动态变化分析表明,HPO-27缺失导致溶酶体分裂事件减少,融合事件增加;过表达HPO-27则显著降低管状溶酶体的数量。与此一致,MROH1 KO细胞中,管状再生溶酶体数量增加,分裂减少。
(2)HPO-27和MROH1与小G蛋白RAB7在溶酶体上共定位,且RAB7活性丧失完全抑制HPO-27/MROH1在溶酶体的富集。体内与体外结合实验表明,HPO-27/MROH1与活性状态的,而非失活状态的RAB7存在直接相互作用,表明HPO-27/MROH1作为RAB-7的效应子被招募到溶酶体。
(3)超分辨显微镜连续成像结果显示,HPO-27和MROH1被招募至溶酶体,富集在膜分裂位点,介导溶酶体管状膜的缢缩和裂解。上述结果表明,HPO-27和MROH1被RAB7募集RAB7至溶酶体,调控溶酶体膜分裂。
随后,研究人员进一步深入探究了HPO-27和MROH1在介导溶酶体膜分裂方面的具体机制。他们分别表达和纯化了HPO-27和MROH1蛋白,并利用体外重构的膜分裂实验(SMrT assay)来检测其膜分裂活性。研究者观察到,HPO-27和MROH1蛋白主要与磷脂酸(phosphatic acid,PA)结合,并能在含有PA和荧光染料的稳定支撑膜管(SMrTs)上发生富集,从而介导膜管的缢缩和断裂。
结合结构预测、截短体构建、超分辨显微成像、负染电子显微镜和体外重构膜管分裂活性检测等方法,研究者发现HPO-27或MROH1的单体能够通过首尾相接的方式发生寡聚化,在线虫、哺乳动物细胞、以及体外重构系统重中介导溶酶体及体外重构膜管的缢缩与分裂,而HPO-27的末端HEAT重复结构域对其自组装、溶酶体富集和膜分裂活性至关重要。
综上,该研究发现HPO-27及其同源蛋白MROH1是溶酶体膜分裂因子,其通过自组装介导溶酶体管状膜的缢缩和分裂。值得注意的是,与经典的膜分裂因子Dynamin及其超家族成员不同,HPO-27和MROH1不具有ATPase或GTPase活性。在体外膜分裂实验中,它们以不直接消耗能量分子(ATP/GTP)的方式介导膜管分裂,表明HPO-27和MROH1是一类新的膜分裂因子。HPO-27和MROH1的发现为溶酶体膜及其他膜分裂研究提供了新思路,为进一步揭示溶酶体稳态调控及生理意义奠定了重要基础。
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