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DeepMind AlphaGenome2来了,引入cell states标签

2026年11月11日,Google DeepMind上线AlphaGenome 2(AG2)78页预印本文章,

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号称AG2仅凭一段DNA序列 + 一个细胞状态标签( a target tissue, cell type, or cell state),就能免微调地跨组织、跨细胞类型精准预测调控活性与变异效应。

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AlphaGenome回顾

AlphaGenome是2025年Google DeepMind开发的一个深度学习模型,专门用来预测DNA序列变异对基因调控的影响。

下图是其核心技能,输入1Mb DNA序列,AlphaGenome能同时预测11种不同的基因组信号,包括基因表达(RNA-seq)、剪接模式(Splice sites)、染色质状态(ATAC)、转录因子结合(TF binding)等等。

Avsec, Ž., Latysheva, N., Cheng, J. _et al._ Advancing regulatory variant effect prediction with AlphaGenome. _Nature_ **649**, 1206–1218 (2026).
Avsec, Ž., Latysheva, N., Cheng, J. _et al._ Advancing regulatory variant effect prediction with AlphaGenome. _Nature_ **649**, 1206–1218 (2026). 

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近年来,深度学习正在改变基因组学研究的方式。从DNA序列预测基因表达,到利用AI解析非编码变异的调控功能,研究人员正在尝试建立基因组序列与细胞功能之间更加直接的联系。

Google DeepMind推出的AlphaGenome 2(AG2),正是这一方向上的重要进展。

它试图回答一个长期困扰遗传学研究的问题:

同一段DNA序列,为什么在不同细胞中会产生不同的调控效果?一个非编码变异,又会影响哪个基因、发生在哪种细胞中?

这篇论文的核心价值,是将DNA序列、基因调控、遗传变异和细胞状态整合到同一个预测框架中。

下面通过几个方面理解AlphaGenome 2的主要技术进展。


AlphaGenome 2:从DNA序列预测基因调控活动

传统基因组分析通常需要结合多种实验数据,才能理解DNA序列的功能。例如:

  • RNA-seq:测量基因表达水平。
  • ATAC-seq:检测染色质可及性。
  • ChIP-seq:分析转录因子结合和组蛋白修饰。
  • DNA甲基化测序:研究表观遗传调控。
  • RNA-seq剪接分析:研究转录本的剪接模式。

这些实验从不同角度描述基因组的功能状态,但实验成本较高,而且不同细胞类型的数据往往并不完整。

AlphaGenome 2采用Sequence-to-Function的思路,以DNA序列为输入,结合指定的细胞类型或细胞状态,预测多个层次的基因组调控信号。

模型可以处理1Mb长度的人类或小鼠DNA序列,并预测基因表达、染色质可及性、转录因子结合、组蛋白修饰、DNA甲基化和RNA剪接等信息。

其核心思想是:

让AI不仅学习DNA序列本身,还学习不同细胞如何读取和利用这段DNA。

图1. AlphaGenome 2的整体模型架构、训练数据及预测任务。
图1. AlphaGenome 2的整体模型架构、训练数据及预测任务。

关键进步:理解细胞类型特异性调控

不同细胞拥有基本相同的基因组,但它们表达的基因并不相同。

例如,神经元需要表达与神经信号传递相关的基因,而免疫细胞则需要启动免疫识别和炎症反应相关的基因。

这种差异很大程度上来自细胞类型特异性的基因调控。

AlphaGenome 2的重要改进之一,是进一步引入单细胞组学数据,将细胞类型信息融入模型。

研究团队利用人类和小鼠的单细胞RNA-seq、ATAC-seq等数据,帮助模型学习不同细胞状态下的调控特征。

这使模型能够针对特定细胞条件进行预测,而不是简单地给出组织层面的平均结果。

论文还展示了一个有代表性的案例:

同一个遗传变异,在不同细胞类型中可能产生相反的基因表达效应。这说明传统Bulk RNA-seq观察到的组织水平变化,可能掩盖了不同细胞群体之间的调控差异。

图2. AlphaGenome 2对细胞类型特异性表达及遗传变异效应的预测。
图2. AlphaGenome 2对细胞类型特异性表达及遗传变异效应的预测。

从单细胞数据泛化到新的细胞状态

单细胞测序技术的发展,为研究细胞异质性提供了大量数据。

但不同研究之间往往存在平台、批次和样本差异。如何让模型适应新的单细胞数据集,是一个重要挑战。

AlphaGenome 2采用了一种表达条件化策略。

研究团队首先利用超过1.07亿个人类单细胞表达谱训练表达编码器,将单细胞表达信息映射到低维表示空间。

随后,通过后训练过程,让AlphaGenome 2学习这些细胞表示与DNA序列预测之间的关系。

在实际应用中,可以将新数据集中的细胞表达信息编码,再将细胞群体的平均嵌入作为模型条件。

这样,面对新的细胞类型或细胞状态,模型不必针对每个数据集重新训练整个序列模型。

论文结果显示,这种表达条件化策略在多个测试数据集上表现良好,并且在部分评估中优于针对单个数据集进行微调的方法。

图3. 利用单细胞表达编码器扩展AlphaGenome 2,使其适应新的单细胞数据集和细胞状态。
图3. 利用单细胞表达编码器扩展AlphaGenome 2,使其适应新的单细胞数据集和细胞状态。

从增强子定位到靶基因

非编码区域虽然不直接编码蛋白质,却包含大量重要的基因调控元件。

其中,增强子(Enhancer)可以通过与启动子相互作用,调节远距离靶基因的表达。

问题在于:

一个增强子究竟调控哪个基因?传统研究通常需要结合染色质互作实验、CRISPRi筛选和其他功能实验进行验证。

AlphaGenome 2利用序列归因方法,评估候选调控区域对目标基因表达预测的贡献,从而建立增强子—基因(Enhancer-to-Gene,E2G)连接。

研究团队利用这一方法构建了覆盖640种原代细胞条件的增强子—基因图谱。

同时,论文使用CRISPRi等实验数据对预测结果进行评估。

这一工作的重要意义在于:模型不再只是预测某个DNA区域是否具有调控活性,还尝试进一步确定它可能调控哪个基因。

图4. AlphaGenome 2的增强子—基因连接预测策略、实验验证及跨细胞类型调控图谱。
图4. AlphaGenome 2的增强子—基因连接预测策略、实验验证及跨细胞类型调控图谱。

解析GWAS非编码变异的功能

GWAS已经发现了大量与复杂疾病和生物学性状相关的遗传位点。

但一个长期存在的问题是:

很多关联信号位于非编码区域,无法直接通过蛋白质序列变化解释其功能。找到关联位点只是第一步。

真正重要的是进一步回答:

  • 哪个变异可能具有因果作用?
  • 这个变异影响哪个靶基因?
  • 它在哪种细胞类型中发挥作用?
  • 它可能通过什么调控机制影响基因表达?

AlphaGenome 2尝试将这些问题整合起来。

研究团队利用模型对大规模遗传变异进行评分,结合细胞类型特异性的调控预测,分析变异对基因表达及其他调控信号的潜在影响。

论文展示了多个GWAS位点的分析案例,并将预测结果与已有实验和遗传学证据进行比较。

这为从GWAS关联信号走向具体的基因和细胞机制提供了新的计算分析工具。

5. AlphaGenome 2将非编码GWAS变异与靶基因、细胞类型及潜在调控机制联系起来。
5. AlphaGenome 2将非编码GWAS变异与靶基因、细胞类型及潜在调控机制联系起来。

AlphaGenome 2还有哪些局限?

尽管AlphaGenome 2在多个基准测试中取得了进展,但仍然需要理性看待模型预测结果。

首先,模型预测不等于因果验证。

一个变异被预测具有调控效应,并不意味着它一定是疾病的真正致病变异。

其次,模型对训练数据覆盖不足的细胞状态、瞬时刺激和疾病环境,仍可能存在预测偏差。

此外,远距离调控、染色质不可及区域以及复杂的转录后调控机制,仍然是模型需要进一步改进的方向。

因此,AlphaGenome 2更适合用于候选变异筛选、靶基因优先级排序和调控机制假设生成。

最终结论仍然需要结合CRISPR、报告基因实验及其他功能实验进行验证。

参考:Google DeepMind官方发布 78页预印本文章 AlphaGenome 2 predicts regulatory activity andvariant effects across cell states。